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細胞培養基本過(guò)程

一、準備和安裝過(guò)濾器

清洗好過(guò)濾器,干燥,放入一張孔徑0.22μm的微孔濾膜,用布包裝好,15磅20 min進(jìn)行高壓滅jun處理。 在超凈臺內打開(kāi)過(guò)濾器架好,膠管一端接入濾泵再插入待chu菌的液體中,出口端膠管深入到已消du好的瓶子中。用泵過(guò)濾,過(guò)濾后要檢查濾膜是否完好無(wú)損。 

二、小牛血清的處理 

人肺鱗癌細胞,SK-MES-1細胞市場(chǎng)上出售的小牛血清一般做了滅jun處理,但在使用前還應做熱滅活處理,即通過(guò)加熱的方法破壞補體(近來(lái)也有觀(guān)點(diǎn)認為熱滅活處理是不必要的)。胎牛血清不必滅活。

1、 將血清加熱至56℃并保持30 min,其間要不時(shí)輕輕晃動(dòng),使受熱均勻,防止沉淀析出。

2、 處理后的血清貯存于4℃。

3、 小牛血清在使用前進(jìn)行篩選以掌握血清的質(zhì)量。 

三、生長(cháng)培養基的配制 

除無(wú)血清培養之外,各種合成培養基在使用前需加入一定量的小牛血清或胎牛血清和抗jun 素。培養基分裝成小瓶(100~200 mL)以便使用,翻帽塞塞緊瓶口。按如下比例配制: 基本培養基占80%~90%,小牛血清或胎牛血清占10%~20%。 按1%體積分數加入雙抗貯存液(青霉素+鏈霉素),使青霉素和鏈霉素的終濃度分別為100 U/mL和100 μ/mL,。

四、凍存細胞的復蘇

應遵守慢凍快融的原則。先將水浴鍋調至37-37。5度,取出凍存的細胞迅速放入后將細胞面浸至水面以下不斷搖動(dòng)至融化。

在無(wú)菌臺內將完全培養基加入50ml的小培養瓶?jì)?,約5ml左右,然后用無(wú)菌吸管從凍存管內取出細胞,置培養并內輕輕搖晃,使細胞均勻后置培養箱內培養。

五、傳代

貼壁細胞:

對于貼壁細胞應先吸(倒)盡培養基,吸的越干凈越好,以免中和后加入的消化液,使強度減弱(或PBS洗1-3次)。50ml培養瓶加入消化液約1-3ml,按此比例進(jìn)行消化,(根據經(jīng)驗),晃動(dòng)使消化液鋪均勻置37度培養箱約2-5分鐘,鏡下見(jiàn)細胞收縮變圓或少數脫落后,輕輕振動(dòng)瓶底使細胞全部脫落,加入2-3ml完全培養基后,輕輕吹打,使細胞基本成單個(gè)懸浮,然后分置其它無(wú)菌培養瓶?jì)?,加入完全培養基后繼續培養或實(shí)驗。

懸浮細胞:

一般傳代可直接將細胞原液分置其它培養瓶?jì)?,加入完全培養基繼續培養,如要高濃度可先離心1000rpm,5min后加入完全培養基,輕輕吹勻后,分置其它培養瓶?jì)燃尤胪耆囵B基繼續培養。

六、凍存

將貼壁細胞消化后離心收集,懸浮細胞直接離心收集,以完全培養基或胎牛血清重懸細胞至終濃度約106/ml。加入10%的DMSO。以每管1~2ml分裝至凍存管中。用絕熱材料包裹置-70攝氏度冰箱冷凍過(guò)夜。次日保存到液氮中。

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